HISTOTÉCNICA DE DENTES HUMANOS


Luisa Godoi Pitol
Técnica de Histologia do Laboratório de Pesquisa em Endodontia, Departamento de Odontologia Restauradora, disciplina de Endodontia, Faculdade de Odontologia de Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo.
José Luiz de Souza
Técnico do Serviço de Patologia Cirúrgica do Hospital das Clínicas, Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo. Técnico do Departamento de Histologia das Faculdades Uni-Mauá de Ribeirão Preto.
Prof. Dr. Jesus Djalma Pécora
Professor Titular, Chefe do Laboratório de Pesquisa em Endodontia Departamento de Odontologia Restauradora, Faculdade de Odontologia de Ribeirão Preto, Universidade de São Paulo.

Descalcificação / Preparo das soluções / Cortes e coloração / Histo-resina

Descalcificação de dentes humanos

Para que se possa examinar os tecidos dentais (dentina, cemento ), deve-se antes de incluir e cortar os tecidos, proceder-se a desmineralização ou descalcificação, método que consiste na remoção do cálcio tecidual, sem alterações na estrutura celular. Para descalcificar dentes humanos podem ser utilizados vários agentes descalcificantes e, citaremos algumas fórmulas:

Ácido Nítrico a 5%:

Para preparar ácido nítrico a 5%, proceda-se do seguinte modo:

Nota:O ácido deve ser colocado muito lentamente na água. Nunca coloque a água no ácido.

Ácido Clorídrico a 5%

Ácido Fórmico a 5%
Associação de ácido fórmico com clorídrico
(Dunja Buntak Kobler. Acta Stomatol Croat v27 n3, 175-180, 1993)

 

 
 
 

Essa solução descalcifica bem os dentes humanos e apresenta a seguinte fórmula:

ácido fórmico: 120 ml
ácido clorídrico: 80 ml
água destilada: 800 ml
Exemplo de como preparar as soluções ácidas a 5%: clique aqui

A descalcificação dos dentes humanos

Os dentes, de acordo com cada trabalho e dependente do que vai ser pesquisado, devem ser colocados em uma solucão formol a 10%, por no mínimo de 48 horas.

Após a fixação, pelo formol, os dentes devem ser lavados em água corrente, por um período de 20 minutos.

Decorrido o tempo de lavagem em água, os dentes são colocados em recipientes de vidro com capacidade para 20 ml e , a seguir, o ácido escolhido é colocado nesse recipiente, que será trocado a cada 24 horas, até o dente estar descalcificado.

O tempo de descalcificação dependerá da temperatura ambiente. Quanto maior for a temperatura, mais rápida é a descalcificação.

Para testar se a descalcificação está no estado desejado, utilize um alfinete e virifique se ele penetra sem grande esforço, na peça.

Uma vez completada a descalcificação, os dentes estão preparados para inclusão em parafina.

Veja o novo método de descalcificação magnetrônica

Preparo da parafina

Pegar um quilo de parafina e acrescentar 10 gramas de cera de abelha, a mistura deverá ser colocada em um recipiente de vidro (balão) e em seguida aquecida à 70 graus centígrados, em uma estufa. Após a completa liquefação da mistura, a parafina está pronta para ser utilizada.

Preparo do dispositivo de papel para receber a parafina e o dente: (forma)

O dispositivo para incluir o dente em parafina pode ser uma forminha das utilizadas para colocar doces, porém, explicaremos aqui, como preparar uma forma de papel:

Veja o exemplo de como dobrar o papel aqui.

Soluções utilizadas para a coloração dos dentes em H.E.

Hematoxilina (Harris)

Modo de preparar: Notas: Solução de estoque de Eosina a 1%:
Eosina Y amarela: 2 gramas
Água destilada: 200 ml

 

 
 
 

Solução de estoque de Floxina a 1%

Floxina B: 1grama
Água destilada: 100 ml

 

 
 
 

Solução Eosina-Floxina

Esta solução deve ser preparada para ser utilizada no máximo entre 7 a 15 dias e deve ser preparada do seguinte modo:

Solução estoque de Eosina a 1%: 50 ml
Solução estoque de Floxina a 1%: 5 ml
Álcool 96 GL: 380 ml
Ácido acético glacial: 2 ml

 

 
 
 

Solução de Scott

Sulfato de magnésio: 10 gramas
Bicarbonato de sódio: 1,8 gramas
Água destilada: 500 ml
Timol: 0,5 gramas

 

 
 
 

Para preparar a solução de Scott, coloque a água destilada em um recipiente e a seguir coloque os demais componentes da fórmula.

Solução Álcool/Ácido

Prepare esta solução do seguinte modo:

Coloque em um recipiente 99 mililitros de álcool 70 Gl e adicione 1 mililitro de ácido clorídrico concentrado.

Solução Álcool/Xilol

Misturar 250 ml de Álcool 96 GL com 250 ml de Xilol.

Preparo dos Cortes e Processo de Coloração

1) Após a descalcificação, deve-se estabelecer, de acordo com a pesquisa o tipo de corte que o dente vai receber: sagital ou transversal. Caso o dente vá receber corte sagital, ele pode, para facilitar o processo ser seccionado transversalmente nos terços cervical, médio e apical.

2) Lavar os dentes ou os terços dos dentes em água corrente por meia hora.

3) Neutralizá-los em uma solução de sulfato de sódio a 4%, durante 15 minutos.

4) Lavar em água corrente por 10 minutos.

5) Desidratação:

Nota: são 4 banhos de álcool absoluto

Esquema:
 

Álcool 96º

Álcool 100º

Álcool 100º

Álcool 100º

Álcool 100º

6) Clarificação:

Dois banhos em Xilol ou Benzol por 30 minutos cada.

Esquema:
 

Xilol ou Benzol

Xilol ou Benzol

7) Parafinização:

Esquema:
 

Primeiro banho de Parafina 70 ºC por 2 horas.

Segundo banho de Parafina 70 ºC por 2 horas.

8) Montagem dos dentes em blocos de parafina:

Após a solidificação da parafina, retire o papel e apare as arestas do bloco de parafina.

Colocar os blocos de parafina com os dentes incluídos, em uma geladeira por meia horas.

Na geladeira, os blocos podem ficar até o momento de uso.

9) Corte no micrótomo

Para cortar estruturas dentais os cortes podem ser de 5 ou 6 micrometros de espessura.

Após os cortes, pegar a fita de parafina que contém os cortes e colocá-la em água, em um recipiente de Banho-Maria a 37°C. Deixar os cortes esticarem. Após os cortes estarem bem esticados, pegá-los por meio da lâmina de vidro para microscopia própria.

Colocar as lâminas com os cortes histológicos em uma placa aquecedora (37°C) e deixá-las secar por 15 minutos e, a seguir, colocá-las na estufa a 70°C, por 30 minutos.

10) Desparafinização e coloração:

Esquema:
 

1º banho de xilol

1º banho de xilol

Esquema:
 

Álcool 100 (1º banho)

Álcool 100 (2º banho)

Álcool 96 GL

Esquema:
 

Corar hematoxilina (tempo de 3 a 5 minutos)

Esquema:
 

Solução álcool-ácida (20 segundos)

Esquema:
 

Mergulhar as lâminas na solução de Scott

Esquema:
 

Solução de Eosina-Floxina por 40 segundos

Esquema:
 
Álcool 96 GL
2 minutos
Álcool 100
2 minutos
Álcool 100
2 minutos
Álcool 100
2 minutos
Álcool 100
2 minutos
Esquema:
 

Solução de álcool-xilol

Banho de xilol por dois minutos

Solução de xilol permanecer até o momento da montagem

11) Montar as lâminas:

Colocar sobre os cortes histológicos o Entellan (Merck) ou o bálsamo do Canadá e colocar a lamínula.

Método de coloração Gran

Preparo das soluções:

Violeta:

Pesar 1 grama de cristal de violeta e dissolver em 100 ml de água destilada.

Bicarbonato de sódio:

Pesar 5 gramas de bicarbonato de sódio e dissolver em 100 ml de água destilada.

Iodo:

Colocar um grama de iodo e dois gramas de iodeto de potássio em 300 ml de água destilada.

Solução Eter/acetona1:1 (colocar 50 ml de eter em 50 ml de acetona)

Solução de acetona/xilol 1:1 (colocar 50 ml de acetona em 50 ml de xilol)

Fucsina básica: Pesar 0,25 grama de fucsina básica e colocar em 100 ml de água destilada. Assim preparada, pegue 10 ml dessa fucsina e misture com 90 ml de água destilada. Essa diluição será utilizada para corar.

Nota:Na hora de usar, pegar 20 ml da solução preparada de violeta e 5ml da solução de bicarbonado de sódio.

Ácido pícrico:

Preparar um solução saturada.

Modo de corar Browm Bren:

INTRODUÇÃO AO USO KULSER (HISTO-RESINA)

O uso de resina de metacrilato (TECNOVIT 7100) foi introduzido no sistema de inclusão e microtomia para preparos histológicos com a possibilidade de se obter cortes finíssimos de até 1 micrometro. A resina infiltra de maneira completa e homogêna em todos os componentes dos tecidos. Sua aplicação tem sido muito difundida.

Essa resina sintética (TECHNOVIT) contém hidroximetil metacrilato (HEMA) é muito tóxica, sendo irritante para os olhos, pele e trato respiratório. Ao utilizá-la, o profissional deve tomar todo cuidado para não deixá-la entrar em contato com os olhos e a pele. O local de trabalho deve possuir boa ventilação e, ainda ser dotado de sistema de exaustão, para evitar a inalação dos vapores da resina, que é volátil.

A resina TECHNOVIT 7100 (líqüida) polimeriza uniformemente à temperatura ambiente quando se utiliza as proporções indicada pelo fabricante. A polimerização ocorre a entre 35 oC e 38 oC, quando se utiliza o Histoform's e ante 40 oC e 45 oC, quando se utiliza o Histoform Q

A elasticidade do TECNOVIT 7100 possibilita cortes finíssimo em um micrótomo de alta qualidade. As navalhas descartáveis HISTO-KNIFE da marca KULZER.

O estiramento dos cortes é bom e rápido e cumpre salientar que ele deve ser realizado em água fria.

A coloração dos tecidos é possível ser realizada em curto tempo e com grande qualidade em todos os métodos conhecidos.

O líqüido (HARNER II) contém dimetilsulfóxico e é higroscópico, portanto o frasco deve ser fechado imediatamente após a retirada da quantidade necessária para o trabalho. (Hardner I) contém peróxido de benzoila, Deve-se fechar hermeticamente o frasco, pois o produto é muito tóxico. Manter os frascos em local fresco, ventilado. esses componentes tem vida média de um ano, quando conservada à temperatura ambiente.

Todas as superfícies que vão entrar em contato com o TECNOVIT devem estar limpas e desengorduradas. Para a limpeza das superfícies, que receberão a resina, devem ser limpas com um dos seguintes produtos: tricloroetileno, percloroetileno ou benzina. Para a inclusão deve-se utilizar bases de polietileno ou borracha de silicone.

Para aplicar essa técnica utiliza-se os seguintes acessórios:

TECHNOVIT 7100: Plástico de polimerização à frio para inclusão.
HISTOFOR'S: Molde de inclusão de teflon.
HISTOFORM Q: Molde para fragmentos grandes.
HISTOBLOC: Suporte para fixação de Blocos histológicos.
TECHNONIT 3040: Plástico de endurecimento rápido para a fixação das amostras sobre o histobloc.

 

 
 
 

Preparação dos tecidos

Realiza-se a fixação dos tecidos a serem analisados, de maneira habitual e, a desidratação, segue-se as normas de rotina do laboratório.

Para a diafanização utiliza-se uma mistura de TECNOVIT preparada do seguinte modo:

Colocar 100 ml de TECNOVIT em um frasco e adicionar 1 saquinho de HARDNER I. essa solução, assim preparada, tem uma vida útil de quatro semanas e dura por mais tempo se for mantida em geladeira.

Os tecidos são mantidos nesta solução diafanizadora por um tempo que varia de 1 a 12 horas, dependendo da espessura das amostras e classe dos tecidos. As peças a serem analizadas são colocadas em em moldes individuais que contém 1 ou mais ml da solução diafanizadora. As peças devem ser agitadas, na posição desejada.

Após obtida a diafanização das peças, a inclusão é realizada com o mesmo líqüido diafanizador, com a adição de um endurecedor: HARDNER II

Para preparar o líqüido de inclusão faz-se o seguinte:

Pega-se 15 ml da solução preparada para a diafanização e adiciona-se 1 ml do endurecedor (HARDNER II) sob agitação constante até total mistura. Para esse intento deve-se utilizar vidraria graduada de alta qualidade e precisão. O tempo para essa preparação é de 3 a 4 minutos, pois a partir desse tempo, inicia-se a polimerização da resina.

À temperatura de 23 oC, as amostras preparadas polimerizam de forma homogênea e com pequeno desprendimento de calor, num tempo que varia de 60 a 120 minutos no HISTOFORM'S ou num tempo que varia de 100 a 120 minutos no HISTOFORM Q.

Após a adição do HARNER II, o tempo de trabalho é de apenas 5 minutos. No caso da solução de inclusão parecer endurecida para os propósitos, pode-se adicionar 5% de polietileno glicol 400 para amolecer a solução e retardar o endurecimento.

Montagem:

Para fixar o bloco obtido, ao suporte de encaixe no micrótomo pode-se utilizar o TECHNOVIT 3040, que é preparado do seguinte modo:

Misturar 2 volumes de TECNOVIT 3040 (pó) para 1 volume de TECNOVIT líqüido. Pegar 2 ml desse preparado e colocar na base do bloco já pronto e sobre ele, o suporte. Após 5 ou 10 minutos pode-se remover o bloco e proceder a microtomia.

Microtomia:

Pode-se obter cortes histológicos de até 1 micrometro de espessura e em geral, não há necessidade de se aparar os cortes em líquido como na microscopia eletrônica. Mas se isto for desejável pode-se utilizar liqüido que não seja diluente pra a resina. pode-se utilizar alcool metílico diluido em pequena quantidade de água.

Os procedimentos posteriores, tais como: montagem dos cortes nas lâminas, colorações, etc, devem seguir os métodos rotineiros utilizados no laboratório. Não há necessidade de desplastificar os cortes histológicos.

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